Biosynthesis of aminocoumarin antibiotics in Streptomyces : Generation of structural analogues by genetic engineering and insights into the regulation of antibiotic production

DSpace Repository


Dateien:
Aufrufstatistik

URI: http://nbn-resolving.de/urn:nbn:de:bsz:21-opus-15147
http://hdl.handle.net/10900/48693
Dokumentart: Dissertation
Date: 2004
Language: English
Faculty: 7 Mathematisch-Naturwissenschaftliche Fakultät
Department: Sonstige - Chemie und Pharmazie
Advisor: Heide, Lutz
Day of Oral Examination: 2004-12-07
DDC Classifikation: 540 - Chemistry and allied sciences
Keywords: Antibiotikum , Biosynthese , Streptomyces
Other Keywords: Antibiotika , Aminocoumarin , Regulation , Biosynthese , Streptomyces
antibiotic , aminocoumarin , regulation , biosynthesis , Streptomyces
License: Publishing license including print on demand
Order a printed copy: Print-on-Demand
Show full item record

Inhaltszusammenfassung:

Die Aminocoumarinantibiotika Novobiocin (nov) und Clorobiocin (clo) sind potente Gyrasehemmer, die von unterschiedlichen Streptomyces-Stämmen gebildet werden. Da sie strukturell eng verwandt sind und ihre Biosynthese-Gencluster kloniert und sequenziert wurden, stellen sie interessante Ausgangssubstanzen für die Entwicklung neuer Wirkstoffe durch genetische Manipulation der Produzenten dar. Der Funktionsnachweis der Gene und die genetische Manipulierbarkeit von Produzenten sind jedoch Voraussetzungen dafür. Clorobiocin ist potenter als Novobiocin. Es unterscheidet sich vom klinisch untersuchten Novobiocin durch die Substitution an C-8´ des Aminocoumarinrings (-Cl anstatt von -CH3), und durch Anwesenheit einer 5-Methylpyrrol-2-carboxyl Einheit anstatt einer Carbamoylgruppe an 3´´-OH des Desoxyzuckers. Ein Ziel dieser Dissertation war die Produktion von Hybrid-Antibiotika, in denen die strukturellen Eigenschaften dieser beiden Stoffe kombiniert sind. Durch Geninaktivierung wurde clo-hal als das Gen nachgewiesen, das für die Halogenierung von Clorobiocin zuständig ist. Die Expression des Methyltransferasegens novO in der clo-hal- Mutante des Clorobiocinproduzenten S. roseochromogenes führte zur effizienten Bildung eines Clorobiocin-Analogon mit -CH3 anstatt von -Cl an C-8´ (= novclobiocin 102). Jedoch waren frühere Versuche zur Herstellung des mit einem Chloratom an C-8´ und einer Carbamoylgruppe an 3´´-OH (= novclobiocin 114) versehenen Hybridantibiotikums im natürlichen Novobiocinproduzenten S. spheroides gescheitert (Pojer und Heide, unveröffentlichte Daten), weil dieser Stamm genetisch nur schwer zu manipulieren ist. Um dieses Problem zu umgehen, wurde das komplette Novobiocin-Cluster nun in den gut bekannten und einfach zu manipulierenden S. coelicolor und S. lividans Stämmen exprimiert. S. coelicolor M512 Stämme produzierten mindestens fünfmal mehr des Antibiotikums als S. lividans TK24. Deshalb wurden die folgenden Untersuchungen in S. coelicolor M512 durchgeführt. Die Inaktivierung von novO wurde im Cosmid mittels lambda-Red-vermittelter Rekombination in Escherichia coli erzielt. Anschließende Integration des novO- Cosmids in das S. coelicolor Genom und Expression von clo-hal (in einem replikativen Expressionsplasmid) erlaubten rasch die Produktion des gewünschten Hybrid-Antibiotikums Novclobiocin 114. Die Halogenase BhaA ist für die 3-Chlorierung der beta-Hydroxy-tyrosyl Einheiten des Glykopeptid-Antibiotikums Balhimycin verantwortlich. BhaA war nicht in der Lage, Clo-hal funktionell zu ersetzen. Dies spricht dafür, dass die zwei Halogenasen unterschiedliche Substratspezifität besitzen. Der Vergleich der antibakteriellen Aktivität von Clorobiocin- und Novobiocin-Analoga mit -Cl, -H oder -CH3 an C-8´ zeigte, dass Substitution mit -CH3 bzw. -Cl in beiden Fällen wichtig für die biologische Aktivität war. Während -CH3 bzw. -Cl zu vergleichbarer Aktivität führten, verursachte -H einen starken Aktivitätsverlust. Zudem wurde mittels genetischer und biochemischer Methoden bewiesen, dass NovG ein positiver Regulator der Novobiocin-Biosynthese ist. S. coelicolor Stämme mit einem novG-defekten Novobiocincluster wurden hergestellt. Diese novG- Mutanten produzierten nur noch 2% Novobiocin im Vergleich zum Stamm mit dem intakten Cluster. Die Produktion konnte durch Expression einer intakten Kopie von novG wiederhergestellt werden. Die Einführung von novG in einem Multicopy-Plasmid in den S. coelicolor Stamm mit dem intakten Novobiocin-Cluster führte zu fast dreifacher Überproduktion des Antibiotikums. Dies deutet darauf hin, dass die Novobiocin-Biosynthese durch die Verfügbarkeit von NovG-Protein begrenzt wird. Außerdem zeigte gereinigtes NovG-Protein mit einem N-terminalen His6-Tag spezifische DNA-bindende Aktivität für die novG-novH bzw. cloG-cloY intergenetischen Regionen des Novobiocin- bzw. Clorobiocin-Clusters. Durch Vergleich der DNA-Sequenzen dieser Fragmente wurden konservierte palindromische Sequenzen in beiden Fragmenten gefunden. Diese palindromischen Sequenzen sind ähnlich zu den für StrR identifizierten Bindungsstellen im Streptomycin-Cluster. Die Consensus-Sequenz für die StrR- und für die putative NovG-Bindungsstelle ist GTTCRACTG(N)11CRGTYGAAC. Daher gehören NovG und StrR wahrscheinlich zur gleichen Familie von DNA-bindenden, regulatorischen Proteinen. Außerdem bewies die Inaktivierung von novE mittels Genaustausch durch PCR-Targeting, dass novE keine essentielle katalytische Funktion in der Novobiocin-Biosynthese hat, da Novobiocin immer noch gebildet wird. Eine regulatorische Rolle kann für dieses Gen wegen der 25-fachen Produktivitätsverringerung in der Mutante vermutet werden.

Abstract:

The aminocoumarin antibiotics novobiocin and clorobiocin are potent inhibitors of bacterial DNA gyrase produced by different Streptomyces strains. Since they are closely related in structure, and their biosynthetic gene clusters have been cloned and sequenced, they represent interesting starting compounds for the development of new antibacterial agents by genetic engineering. However, the functional analysis of biosynthetic genes and the availability of genetic tools for manipulation of producer strains are pre-requisites for such approaches. Clorobiocin is more potent than novobiocin. It differs from the latter, clinically approved drug in the substitution pattern at C-8´ of the aminocoumarin moiety, carrying a chlorine atom instead of a methyl group, and in the presence of a 5-methylpyrrole-2-carboxyl moiety instead of a carbamoyl group at 3´´-OH of the deoxysugar unit. One aim of this thesis was the production of hybrid antibiotics, combining structural features of these two compounds. By gene inactivation, clo-hal was identified as the gene of the halogenase responsible for the introduction of the chlorine atom of clorobiocin. Expression of the methyltransferase gene novO in the clo-hal- mutant of the clorobiocin producer S. roseochromogenes led to the very efficient formation of a clorobiocin analog with -CH3 instead of -Cl at C-8´ (= novclobiocin 102). However, earlier attempts to generate a hybrid antibiotic with a chlorine atom at C-8´ and a carbamoyl group at 3´´-OH (novclobiocin 114) by conventional gene inactivation/gene expression experiments in the novobiocin producer S. spheroides had remained unsuccessful (Pojer and Heide, unpublished results), due to difficulties in the genetic manipulation of this natural producer. In order to circumvent this problem, the entire biosynthetic gene cluster of novobiocin was now expressed in S. coelicolor and S. lividans which are well characterized and easy to manipulate. S. coelicolor M512 derivatives produced at least five times more of the antibiotic than S. lividans TK24 and further investigations were carried out using the former strain as host. Inactivation of the methyltransferase gene novO could be rapidly achieved in the cosmid by lambda-Red-mediated recombination in Escherichia coli. Subsequent integration of the novO- cosmid into the S. coelicolor genome, followed by co-expression of clo-hal, readily allowed the production of the desired hybrid antibiotic novclobiocin 114. BhaA, responsible for 3-chlorination of the beta-hydroxy-tyrosyl moieties of the glycopeptide antibiotic balhimycin, was unable to replace Clo-hal, suggesting that the two halogenases have different substrate specificities. Comparison of the antibacterial activity of clorobiocin and novobiocin analogues with –Cl, –H or -CH3 at C-8´ showed that substitution with either -CH3 or -Cl was important for biological activity. -CH3 or -Cl led to comparable activity, whereas -H led to a strong loss in activity. Moreover, functional proof for the role of NovG as a positive regulator of novobiocin biosynthesis was provided by genetic and biochemical approaches. Using the method described above, novG- mutants were created. These novG- mutants produced only 2% of the novobiocin amount formed by the S. coelicolor strains carrying the intact novobiocin cluster. The production could be restored by introducing an intact copy of novG into the mutant. The introduction of novG on a multicopy plasmid into the strain carrying the intact novobiocin cluster led to almost three-fold overproduction of the antibiotic, suggesting that novobiocin biosynthesis is limited by the availability of NovG protein. Furthermore, purified N-terminal His6 tagged NovG showed specific DNA-binding activity for the novG-novH and for the cloG-cloY intergenic regions of the novobiocin and clorobiocin biosynthetic gene cluster, respectively. By comparing the DNA sequences of the fragments binding NovG, conserved inverted repeats were found in both fragments, similar to those identified as the binding sites for StrR, the well-studied pathway-specific transcriptional activator of streptomycin biosynthesis. The consensus sequence for the StrR and the putative NovG binding sites is GTTCRACTG(N)11CRGTYGAAC. Therefore, NovG and StrR apparently belong to the same family of DNA-binding regulatory proteins. Furthermore, inactivation of novE by gene replacement using PCR targeting proved that novE does not have an essential catalytic role in novobiocin biosynthesis, since some novobiocin was still produced by the mutants. This gene is likely to have a regulatory function, as a 25-fold drop in productivity was observed in the mutants.

This item appears in the following Collection(s)